實驗用的動物怎麼處置

⑴ 用過的小白鼠如何處理

說一下日本的處理方式吧。試驗用小白鼠通常會被取組織以供研究,但的確也有少部分沒死但是也沒用了的,比如腫瘤研究已經用各種方法讓小鼠患了癌症的,那麼需要人道處理。第一,人道處死,最常用的是二氧化碳窒息死亡,加吸入性麻醉劑減少痛苦。第二,處死後的小白鼠暫時冰凍保存,一定數量或時間後,集中掩埋(取了組織的動物屍體也一並掩埋)。第三,使用動物數量較多的單位如國立研究所,都有動物慰靈碑,每年會選一天,研究所所長或副所長致辭,全體研究人員參加,為實驗動物默哀並感謝實驗動物。第四,就算這樣國立研究所也經常大門緊管,因為怕動物保護組織抗議。日本的本土宗教泛神論,神馬都是神靈,死了的老鼠也不例外,所以給老鼠默哀不奇怪,但是其它國家是不是這樣我不是很清楚。
記得採納啊

⑵ 實驗動物在死後怎樣處理

根據規定，試驗後的動物都是要無害化處理的，不能污染周邊環境。一般就是深埋或者焚燒。

⑶ 動物實驗結束後對動物的處理

動物實驗結束後，屍體會放到-20冰箱保存，會有專門的處理公司收起統一處理。——MDL

⑷ 現今科學家用來做實驗的小動物最後將怎樣處理

不同的動物要求不一樣.
理論上有3類動物必須殺死焚燒深埋:
1 凡是染色體變異或基因突變的生物;
2 毒理學實驗動物;
3 病理學實驗動物;
其他動物,如果活著,是可以放生的.但是事實上很多研究所寧願殺死.因為放生很麻煩.
如果是死動物,一般不允許食用,要求焚燒深埋.但是簡單的解剖例外.不過一般沒人吃.

⑸ 實驗室解剖後的無污染動物如何處理

實驗室解剖後的無污染動物處理：進行焚燒或深埋的無害化處理。

無害化生物實驗（比如實驗蝙蝠是否依靠眼睛識別飛行方位）：人類做生物實驗是為了更好的保護自然，包括動物和植物，做完實驗，就應該將動物放回大自然。放歸方式應該放生到抓捕地點方生。

無害化處理制度

為了畜產品質量安全，保護人民身體健康，盡快徹底撲滅動物疫病，消滅疫源，規范規模場無害化處理工作，保障養殖業生產安全，根據《中華人民共和國動物防疫法》、《重大動物疫情應急條例》，制定本制度，請認真遵照執行。

一、當養殖場的畜禽發生疫病死亡時，必須堅持「五不一處理」原則：即不宰殺、不販運、不買賣、不丟棄、不食用，進行徹底的無害化處理。

二、每個養殖場必須根據養殖規模在場內下風口修一個無害化處理化屍池。

⑹ 做微生物實驗時，實驗結束後，實驗室的廢棄物，下腳料如何處理

微生物實驗培養基如果打開了，不能再用，就集中倒入到廢品袋中處理，如果是沒有打開的，可以冷卻後放到冰箱中冷藏備用。
微生物要高溫處理以奐污染環境。
某些試劑（如重金屬、有毒的）先同一倒入廢液缸，交由相關部門處理。
如果有實驗動物，就妥善處理，最好是處死後再處理，避免他人食用。
還有就是注意清潔儀器，打掃實驗室等，呵呵，差不多就這些。

⑺ 我想問下，醫院或者學校實驗用後的動物比如說兔子，實驗完畢後是怎麼處理的

如果是解剖，實驗後則變成食物。如果是葯理實驗，過後則埋掉。

⑻ 動物學實驗的實驗動物常見的處理方法

一、編號
實驗動物常需要標記以示區別。編號的方法很多，根據動物的種類數量和觀察時間長短等因素來選擇合適的標記方法。
(一)掛牌法：將號碼烙壓在圓形或方形金屬牌上(最好用鋁或不銹鋼的,它可長期使用不生銹),或將號碼按實驗分組編號烙在栓動物頸部的皮帶上，將此頸圈固定在動物頸部。該法適用於狗等大型動物。
(二)打號法：用刺數鉗(又稱耳號鉗)將號碼打在動物耳朵上。打號前用蘸有酒精的棉球擦凈耳朵，用耳號鉗刺上號碼，然後在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。該法適用於耳朵比較大的兔、狗等動物。
(三)針刺法：用七號或八號針頭蘸取少量碳素墨水，在耳部、前後肢以及尾部等處刺入皮下，在受刺部位留有一黑色標記。該法適用於大小鼠、豚鼠等。在實驗動物數量少的情況下，也可用於兔、狗等動物。
(四)化學葯品塗染動物被毛法：經常應用的塗染化學葯品有
塗染紅色：0.5%中性紅或品紅溶液
塗染黃色：3-5%苦味酸溶液
塗染黑色：煤焦油的酒精溶液
根據實驗分組編號的需要，可用一種化學葯品塗染實驗動物動物背部被毛就可以。如果實驗動物數量較多，則可以選擇兩種染料。該方法對於實驗周期短的實驗動物較合適，時間長了染料易退掉；對於哺乳期的子畜也不適合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五)剪毛法：該法適用於大、中型動物，如狗、兔等。方法是用剪毛刀在動物一側或背部剪出號碼，此法編號清楚可靠，但只適於短期觀察。
(六)打孔或剪缺口法：可用打孔機在兔耳一定位置打一小孔來表示一定的號碼。如用剪子剪缺口,應在剪後用滑石粉捻一下,以免癒合後看不出來。該法可以編至1～ 9999號，此種方法常在飼養大量動物時作為終身號採用。
二、分組
(一)分組的原則：進行動物實驗時，經常需要將選擇好的實驗動物按研究的需要分成若干組。動物分組應按隨機分配的原則，使每隻動物都有同等機會被分配到各個實驗組與對照組中去，以避免各組之間的差別,影響實驗結果，特別是進行准確的統計檢驗,必須在隨機分組的基礎上進行。
每組動物數量應按實驗周期長短、實驗類型及統計學要求而定。如果是慢性實驗或需要定期處死動物進行檢驗的實驗，就要求選較多的動物，以補足動物自然死亡和認為處死所喪失的數量，確保實驗結束時有合乎統計學要求的動物數量存在。
(二)建立對照組：分組時應建立對照組。1.自身對照組：是指實驗數據而言。實驗動物本身在實驗處理前、後兩個階段的各項相關數據就分別是對照組和實驗組的實驗結果，此法可排除生物間的個體差異。2.平行對照組：有正對照組和負對照組兩種。給實驗組動物某種處理，而給正對照組用同樣方法進行處理，但並不採用實驗所要求的葯物或手段，負對照組則不給任何處理。3.具體分組時，應避免人為因素, 隨機把所有的動物進行編號，然後令其雙數為A組(實驗組),單數為B組(對照組)即可或反之。如果要分若干個組時，應該用隨機數字表示進行完全隨機分組。 一、實驗動物的除毛
在動物實驗中，被毛有時會影響實驗操作與觀察，因此必須除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脫毛等。
(一)剪毛法：剪毛法是將動物固定後，先用蘸有水的紗布把被毛浸濕，再用剪毛剪刀緊貼皮膚剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮膚。剪下的毛應集中放在一容器內，防止到處飛揚。給狗、羊等動物采血或新生乳牛放血制備血清常用此法。
(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳緣靜脈注射或尾靜脈注射時常用此法。
(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去動物被毛的方法。如動物被毛較長，先要用剪刀將其剪短，再用刷子蘸溫肥皂水將剃毛部位浸透，然後再用剃毛刀除毛。本法適用於暴露外科手術區。
(四)脫毛法：脫毛法是用化學葯品脫去動物被毛的方法。首先將被毛剪短，然後用棉球蘸取脫毛劑，在所需部位塗一薄層，2～3分鍾後用溫水洗去脫落的被毛，用紗布擦乾，再塗一層油脂即可。
適用於狗等大動物的脫毛劑配方為：硫化鈉10g，生石灰15g，溶於100ml水中。
適用於兔、鼠等動物的脫毛劑的配方為：1. 硫化鈉3g,肥皂粉1g,澱粉7g,加適量水調成糊狀；2. 硫化鈉8g,澱粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3. 硫化鈉8g溶於100ml水中。
二、實驗動物的給葯
在動物實驗中，為了觀察葯物對機體功能、代謝及形態引起的變化，常需要將葯物注入動物體內。給葯的途徑和方法多種多樣，可根據實驗目的、實驗動物種類和葯物劑型、劑量等情況確定。
(一)注射給葯法
1. 皮下注射注射時用左手拇指及食指輕輕捏起皮膚，右手持注射器將針頭刺入,固定後即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在後大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外側注射，拔針時，輕按針孔片刻，防葯液逸出。
2. 皮內注射此法用於觀察皮膚血管的通透性變化或觀察皮內反應。 如將一定量的放射性同位素溶液、顏料或致炎物質、葯物等注入皮內，觀察其消失速度和局部血液循環變化，作為皮膚血管通透性觀察指標之一。方法是：將動物注射部位的毛剪去，消毒後，用皮試針頭緊貼皮膚皮層刺入皮內，然後使針頭向上挑起並再稍刺入，即可注射葯液。注射後可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射當給動物注射不溶於水而混懸於油或其他溶劑中的葯物時,常採用肌肉注射。肌肉注射一般選用肌肉發達、無大血管經過的部位，多選臀部。注射時針頭要垂直快速刺入肌肉，如無回血現象即可注射。給大、小鼠作肌肉注射時，選大腿外側肌肉進行注射。
4. 腹腔注射先將動物固定,腹部用酒精棉球擦試消毒，然後在左或右側腹部將針頭刺入皮下，沿皮下向前推進約0.5厘米，再使針頭與皮膚呈45 度角方向穿過腹肌刺入腹腔，此時有落空感，回抽無腸液、尿液後，緩緩推入葯液。此法大小鼠用的較多。
5. 靜脈注射是將葯液直接注射於靜脈管內，使其隨著血液分布全身,迅速奏效。但排泄較快，作用時間較短。
6. 淋巴囊注射蛙類常採用此法,其皮下有數個淋巴囊，注入葯物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭部淋巴囊常作為蛙類給葯途徑。一般多選用腹部淋巴囊給葯。注射時將針頭從蛙大腿上端刺入，經大腿肌層入腹壁肌層，再進入腹壁皮下，即進入淋巴囊，然後注入葯液。
(二)經口給葯法
1. 口服法：把葯物放入飼料或溶於飲水中讓動物自動攝取。此法優點在於簡單方便，缺點是不能保證劑量准確。一般適用於對動物疾病的防治或某些葯物的毒性實驗，製造某些與食物有關的人類疾病動物模型。
2. 灌胃法：在急性實驗中,多採用灌胃法。此法劑量准確。灌胃法是用灌胃器將所應投給動物的葯灌到動物胃內。灌胃器由注射器和特殊的灌胃針構成。小鼠的灌胃針長約4～5cm，直徑為1mm，大鼠的灌胃針長約6～8cm，直徑約1.2mm。灌胃針的尖端焊有一小圓金屬球，金屬球為中空的。焊金屬球的目的是防止針頭刺入氣管或損傷消化道。針頭金屬球端彎曲成20°左右的角度，以適應口腔、食道的生理彎曲度走向。
(三)其它途徑給葯方法
1. 呼吸道給葯：呈粉塵、氣體及蒸氣或霧等狀態的葯物或毒氣,均需要通過動物呼吸道給葯。如實驗時給動物乙醚作吸入麻醉、用鋸末煙霧製作慢性氣管炎動物模型等，特別在毒理學實驗中應用更為廣泛。
2. 皮膚給葯：為了鑒定葯物或毒物經皮膚的吸收作用、局部作用、 致敏作用和光感作用等，均需採用經皮膚給葯方法。如兔和豚鼠常採用背部一定面積的皮膚脫毛後，將一定的葯液塗在皮膚上，葯液經皮膚吸收。
3. 脊髓腔內給葯：此法主要用於錐管麻醉或抽取腦脊液。
4. 腦內給葯：此法常用於微生物學動物實驗,將病原體等接種於被檢動物腦內，然後觀察接種後的各種變化。
5. 直腸內給葯：此種方法常用於動物麻醉。兔直腸內給葯時,常採用灌腸的膠皮管或用14號導尿管代替。
6. 關節腔內給葯：此法常用於關節炎的動物模型復制。

⑼ 做完生物實驗後 應該怎麼處理動物

1、無害化生物實驗（比如實驗蝙蝠是否依靠眼睛識別飛行方位）：人類做生物實驗是為了更好的保護自然，包括動物和植物，做完實驗，就應該將動物放回大自然。放歸方式應該放生到抓捕地點方生。

2、有害化生物實驗（比如實驗某種細菌對於動物的毒性）：為了防止實驗動物逃逸造成微生物外泄、破壞自然環境等不利情況。做完實驗的動物一般要人道毀滅，不會放生的。

⑽ 實驗動物最終會被如何處理

死了啊 還得全部滅菌啊 防止有毒的帶病的傳染什麼的