動物致敏反應為什麼用腹腔注射

㈠ 實驗問題求教，卵清蛋白

你說的實驗我沒做過，我想是把卵清蛋白注射到給動物腹腔讓給動物產生針對所注射的蛋白的抗體對吧？
氫氧化鋁其實是免疫佐劑，目的是增強機體免疫應答，使動物產生的抗體效價更高。
卵清蛋白對於所注射的動物來說屬於異己物質，自然會針對其產生免疫反應，而且是體液免疫，即產生抗體並結合之。具體是什麼情況因為我沒做過這個試驗，不能盡述。

㈡ 抗原免疫動物制備血清，常用動物有哪些

以抗原免疫動物獲得抗血清是制備抗體的經典方法。為了提高免疫效果，在免疫的時候，常輔以佐劑以改變抗原的物理狀態而延長其在體內的滯留時間，使抗原緩慢釋放，同時非特異性的促進局部吞噬細胞反應來增強動物的免疫效果。佐劑的類型較多，目前常用的還是福氏佐劑(Freund』sAdjuvant，FA)。它是一種對大多數抗原都有效的佐劑，但由於它的一些副作用限制了它在實驗動物上的使用。因此，福氏佐劑只能在確實需要的情況下(如使用的抗原為小分子可溶性抗原或半抗原)和強佐劑活性時使用。FA是用礦物油(石蠟油)、乳化劑(羊毛脂)和滅活的分枝桿菌(結核分枝桿菌或卡介苗)組成的油包水乳化佐劑。這三種成分俱全的佐劑稱為福氏完全佐劑(Freund』sComD】eleAdjuvant，FCA)，不含分枝桿菌的佐劑為福氏不完全佐劑(Freund』sInconrpleteAdjuvant，FIA)。石蠟油因不能代謝而存留在注射的部位，這就阻礙了抗原降解或快速反應，起到抗原儲存作用，使抗原緩慢持續的釋放，不斷刺激機體的免疫系統而產生免疫反應。乳化劑對於水溶性抗原與油穩定地乳化是必要的。分枝桿菌具有很強的免疫刺激作用，可以非特異性的激活免疫系統。FCA用於基礎注射，而FIA用於輔助注射以避免分枝桿菌蛋白引起的過敏反應。FA皮下注射或肌內注射可導致多種副作用，例如肉芽腫和無菌性膿腫的形成。腹腔注射引起腹膜炎。由於這些嚴重的副作用，FA不允許用於人或動物的疫苗接種免疫。傳統的免疫方案，包括使用福氏佐劑和某些免疫程序，已不再被一些國家的權威機構所接受。據調查，在荷蘭有64％的研究人員使用FCA，而且，用於多克隆抗體的生產方案差異很大。因此，在1993年，荷蘭發布了利用動物免疫技術制備多克隆抗體的生產指南。主要規定了加強免疫注射的次數、免疫途徑、注射量和佐劑的使用，並且支持使用替代佐劑來替換FCA。由於FCA給實驗動物帶來的嚴重的副反應，對它的使用提出了特別的限制，規定了(小鼠和大鼠sc：0．1nd；i．d：家兔0．o5rI1l；i．P：小鼠0．2nd)推薦使用量和注射途徑。

㈢ 為什麼腹腔注射和灌胃給葯法的生物利用度不同

為什麼腹腔注射和灌胃給葯法的生物利用度不同
腹腔注射優點：操作方便，任何動物不論大小都可腹腔注射。腹膜面積大.密布血管和淋巴管,吸收能力特強,每小時可吸收占動物體重3%~8 %的液體.且腹腔補液時間短,速度快 大號針頭2分鍾即可輸入500毫升葯液,還不考慮心臟超負荷。 缺點：不是所有葯物都可以作腹腔注射。皮下注射優點：1．需迅速達到葯效、不能或不宜經口服給葯時採用。如胰島素口服在胃腸道內易被消化酶破壞，失去作用，而皮下注射迅速被吸收。

㈣ 動物學實驗的實驗動物常見的處理方法

一、編號
實驗動物常需要標記以示區別。編號的方法很多，根據動物的種類數量和觀察時間長短等因素來選擇合適的標記方法。
(一)掛牌法：將號碼烙壓在圓形或方形金屬牌上(最好用鋁或不銹鋼的,它可長期使用不生銹),或將號碼按實驗分組編號烙在栓動物頸部的皮帶上，將此頸圈固定在動物頸部。該法適用於狗等大型動物。
(二)打號法：用刺數鉗(又稱耳號鉗)將號碼打在動物耳朵上。打號前用蘸有酒精的棉球擦凈耳朵，用耳號鉗刺上號碼，然後在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。該法適用於耳朵比較大的兔、狗等動物。
(三)針刺法：用七號或八號針頭蘸取少量碳素墨水，在耳部、前後肢以及尾部等處刺入皮下，在受刺部位留有一黑色標記。該法適用於大小鼠、豚鼠等。在實驗動物數量少的情況下，也可用於兔、狗等動物。
(四)化學葯品塗染動物被毛法：經常應用的塗染化學葯品有
塗染紅色：0.5%中性紅或品紅溶液
塗染黃色：3-5%苦味酸溶液
塗染黑色：煤焦油的酒精溶液
根據實驗分組編號的需要，可用一種化學葯品塗染實驗動物動物背部被毛就可以。如果實驗動物數量較多，則可以選擇兩種染料。該方法對於實驗周期短的實驗動物較合適，時間長了染料易退掉；對於哺乳期的子畜也不適合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五)剪毛法：該法適用於大、中型動物，如狗、兔等。方法是用剪毛刀在動物一側或背部剪出號碼，此法編號清楚可靠，但只適於短期觀察。
(六)打孔或剪缺口法：可用打孔機在兔耳一定位置打一小孔來表示一定的號碼。如用剪子剪缺口,應在剪後用滑石粉捻一下,以免癒合後看不出來。該法可以編至1～ 9999號，此種方法常在飼養大量動物時作為終身號採用。
二、分組
(一)分組的原則：進行動物實驗時，經常需要將選擇好的實驗動物按研究的需要分成若干組。動物分組應按隨機分配的原則，使每隻動物都有同等機會被分配到各個實驗組與對照組中去，以避免各組之間的差別,影響實驗結果，特別是進行准確的統計檢驗,必須在隨機分組的基礎上進行。
每組動物數量應按實驗周期長短、實驗類型及統計學要求而定。如果是慢性實驗或需要定期處死動物進行檢驗的實驗，就要求選較多的動物，以補足動物自然死亡和認為處死所喪失的數量，確保實驗結束時有合乎統計學要求的動物數量存在。
(二)建立對照組：分組時應建立對照組。1.自身對照組：是指實驗數據而言。實驗動物本身在實驗處理前、後兩個階段的各項相關數據就分別是對照組和實驗組的實驗結果，此法可排除生物間的個體差異。2.平行對照組：有正對照組和負對照組兩種。給實驗組動物某種處理，而給正對照組用同樣方法進行處理，但並不採用實驗所要求的葯物或手段，負對照組則不給任何處理。3.具體分組時，應避免人為因素, 隨機把所有的動物進行編號，然後令其雙數為A組(實驗組),單數為B組(對照組)即可或反之。如果要分若干個組時，應該用隨機數字表示進行完全隨機分組。 一、實驗動物的除毛
在動物實驗中，被毛有時會影響實驗操作與觀察，因此必須除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脫毛等。
(一)剪毛法：剪毛法是將動物固定後，先用蘸有水的紗布把被毛浸濕，再用剪毛剪刀緊貼皮膚剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮膚。剪下的毛應集中放在一容器內，防止到處飛揚。給狗、羊等動物采血或新生乳牛放血制備血清常用此法。
(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法。在兔耳緣靜脈注射或尾靜脈注射時常用此法。
(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去動物被毛的方法。如動物被毛較長，先要用剪刀將其剪短，再用刷子蘸溫肥皂水將剃毛部位浸透，然後再用剃毛刀除毛。本法適用於暴露外科手術區。
(四)脫毛法：脫毛法是用化學葯品脫去動物被毛的方法。首先將被毛剪短，然後用棉球蘸取脫毛劑，在所需部位塗一薄層，2～3分鍾後用溫水洗去脫落的被毛，用紗布擦乾，再塗一層油脂即可。
適用於狗等大動物的脫毛劑配方為：硫化鈉10g，生石灰15g，溶於100ml水中。
適用於兔、鼠等動物的脫毛劑的配方為：1. 硫化鈉3g,肥皂粉1g,澱粉7g,加適量水調成糊狀；2. 硫化鈉8g,澱粉7g，糖4g，甘油5g，硼砂1g,加水75ml；3. 硫化鈉8g溶於100ml水中。
二、實驗動物的給葯
在動物實驗中，為了觀察葯物對機體功能、代謝及形態引起的變化，常需要將葯物注入動物體內。給葯的途徑和方法多種多樣，可根據實驗目的、實驗動物種類和葯物劑型、劑量等情況確定。
(一)注射給葯法
1. 皮下注射注射時用左手拇指及食指輕輕捏起皮膚，右手持注射器將針頭刺入,固定後即可進行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或側下腹部；豚鼠在後大腿內側、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外側注射，拔針時，輕按針孔片刻，防葯液逸出。
2. 皮內注射此法用於觀察皮膚血管的通透性變化或觀察皮內反應。 如將一定量的放射性同位素溶液、顏料或致炎物質、葯物等注入皮內，觀察其消失速度和局部血液循環變化，作為皮膚血管通透性觀察指標之一。方法是：將動物注射部位的毛剪去，消毒後，用皮試針頭緊貼皮膚皮層刺入皮內，然後使針頭向上挑起並再稍刺入，即可注射葯液。注射後可見皮膚表面鼓起一白色小皮丘。
3. 肌肉注射當給動物注射不溶於水而混懸於油或其他溶劑中的葯物時,常採用肌肉注射。肌肉注射一般選用肌肉發達、無大血管經過的部位，多選臀部。注射時針頭要垂直快速刺入肌肉，如無回血現象即可注射。給大、小鼠作肌肉注射時，選大腿外側肌肉進行注射。
4. 腹腔注射先將動物固定,腹部用酒精棉球擦試消毒，然後在左或右側腹部將針頭刺入皮下，沿皮下向前推進約0.5厘米，再使針頭與皮膚呈45 度角方向穿過腹肌刺入腹腔，此時有落空感，回抽無腸液、尿液後，緩緩推入葯液。此法大小鼠用的較多。
5. 靜脈注射是將葯液直接注射於靜脈管內，使其隨著血液分布全身,迅速奏效。但排泄較快，作用時間較短。
6. 淋巴囊注射蛙類常採用此法,其皮下有數個淋巴囊，注入葯物甚易吸收。腹部淋巴囊和頭部淋巴囊常作為蛙類給葯途徑。一般多選用腹部淋巴囊給葯。注射時將針頭從蛙大腿上端刺入，經大腿肌層入腹壁肌層，再進入腹壁皮下，即進入淋巴囊，然後注入葯液。
(二)經口給葯法
1. 口服法：把葯物放入飼料或溶於飲水中讓動物自動攝取。此法優點在於簡單方便，缺點是不能保證劑量准確。一般適用於對動物疾病的防治或某些葯物的毒性實驗，製造某些與食物有關的人類疾病動物模型。
2. 灌胃法：在急性實驗中,多採用灌胃法。此法劑量准確。灌胃法是用灌胃器將所應投給動物的葯灌到動物胃內。灌胃器由注射器和特殊的灌胃針構成。小鼠的灌胃針長約4～5cm，直徑為1mm，大鼠的灌胃針長約6～8cm，直徑約1.2mm。灌胃針的尖端焊有一小圓金屬球，金屬球為中空的。焊金屬球的目的是防止針頭刺入氣管或損傷消化道。針頭金屬球端彎曲成20°左右的角度，以適應口腔、食道的生理彎曲度走向。
(三)其它途徑給葯方法
1. 呼吸道給葯：呈粉塵、氣體及蒸氣或霧等狀態的葯物或毒氣,均需要通過動物呼吸道給葯。如實驗時給動物乙醚作吸入麻醉、用鋸末煙霧製作慢性氣管炎動物模型等，特別在毒理學實驗中應用更為廣泛。
2. 皮膚給葯：為了鑒定葯物或毒物經皮膚的吸收作用、局部作用、 致敏作用和光感作用等，均需採用經皮膚給葯方法。如兔和豚鼠常採用背部一定面積的皮膚脫毛後，將一定的葯液塗在皮膚上，葯液經皮膚吸收。
3. 脊髓腔內給葯：此法主要用於錐管麻醉或抽取腦脊液。
4. 腦內給葯：此法常用於微生物學動物實驗,將病原體等接種於被檢動物腦內，然後觀察接種後的各種變化。
5. 直腸內給葯：此種方法常用於動物麻醉。兔直腸內給葯時,常採用灌腸的膠皮管或用14號導尿管代替。
6. 關節腔內給葯：此法常用於關節炎的動物模型復制。

㈤ 動物為什麼採用腹腔注射的方式麻醉

腹腔注射吸收不算快。但是相對於很方便。腹腔注射是把針刺入腹膜壁層。注入葯液。腹膜壁層有大量毛細血管。葯液通過腹膜壁層毛細血管吸收。但是相較於肌肉注射靜脈注射吸收還是慢了。靜脈注射是先全身吸收。但是對於小動物，還是腹腔注射
肌肉注射
皮下注射更方便一點。靜脈穿刺小動物，靜脈細小，很不好找。大動物麻醉時保定不方便。找靜脈較為麻煩。所以，大動物有的也用腹腔注射。

㈥ 臨床預防青黴素過敏反應，注射前為什麼是皮內注射，而不是皮下注射

就抗原進入機體產生免疫應答的強弱來說，皮內注射>皮下注射>肌肉注射>腹腔注射>靜脈注射，所以皮內注射更敏感，更容易發生過敏反應

㈦ 為什麼實驗動物給葯後1小時處理

察一種葯物對實驗動物的作用時。 2;2。在一般情況下。 5： 1 小鼠，一般可取 1/，10～19日的給1/。 4，要考慮給葯動物的年齡大小和體質強弱。如實驗結果出現劑量與作用強度之間毫無規律時;4 份. 確定劑量後，如第一次用葯的作用不明顯，葯物的作用常隨劑量的加大而增強，動物也沒有中毒的表現;15～1/。可以按下述方法確定劑量。 6、皮下。如以狗為例。 以口服量為100時。所以有條件時。如給葯途徑為靜脈、大鼠，一般動物的耐受性要比人大， 45～89 日的給 1/。如出現中毒現象， 或取致死量的 若干分之一作為應用劑量，在適宜的劑量范圍內、腹腔注射，如是幼齡動物，所用劑量也不同，3～6 個月的給 1/. 化學葯品可參考化學結構相似的已知葯物，則應降低劑量再次實驗，以便迅速獲得關於葯物作用的較完整的資料： 1. 用大動物進行實驗時;10～1/，要考慮因給葯途徑不同，最好同時用幾個劑量作實驗，20～44 日的給 1/、貓。必須將人的用葯量換算成動物的用葯量， 特別是化學結構和作用都相似的劑量. 確定動物給葯劑量時、人與動物的用葯量換算方法 人與動物對同一葯物耐受性不同。 一般說確定的給葯劑量是指成年動物的. 確定動物給葯劑量時： 人用葯量： 50～100 兔，一個重要的問題就是給動物用多大的劑量較合適. 植物葯粗製劑的劑量多按生葯折算。劑量太小： 5～10 以上系按單位體重口服用葯量換算，作用不明顯，劑量太大，又可能引起動物中毒致死;2 份，肌肉注射量為 20～30，靜脈注射量為 25，則更應慎重分析,然後用小於中毒量的劑量。 7、豚鼠： 15～20 狗;16份. 先用少量小鼠粗略地探索中毒劑量或致死劑量;5。 3;8 份。 二，作用也明顯，劑量應減小，皮下注射量為 30～50,可以加大劑量再次實驗，防止動物中毒死亡,開始的劑量可採用鼠類的 1/,以後可根據動物的反應調整劑量：6 個月以上的狗給葯劑量為 1 份時，單位體重的用葯量動物比人要高。一般可按下列比例換算，換算比例應適 當減小些

㈧ 給小鼠腹腔注射冰醋酸使其產生疼痛的機制

苯巴比妥鈉具有良好的抗癲癇和抗驚厥作用，故其可以用於驚厥的治療。而尼可剎米可以提高機體神經中樞的興奮性，從而造成機體驚厥，故用尼可剎米復制驚厥模型後用苯巴比妥鈉進行治療，從而觀察苯巴比妥鈉的抗驚厥作用。 方法 分別前後腹腔注射苯巴比妥鈉和尼可剎米後，觀察驚厥發生的情況從而觀察苯巴比妥鈉的抗驚厥作用。 結果與分析 用苯巴比妥鈉的小鼠驚厥率為0，而沒有用的小鼠驚厥率高達100%，死亡率達50%，比較可以發現苯巴比妥鈉具有良好的抗驚厥作用。

驚厥是由於中樞神經系統過度興奮而引起的全身骨骼肌強烈的不隨意收縮，出現強直性或者陣攣性抽搐。苯巴比妥鈉屬於苯巴比妥類葯物，具有良好的中樞抑製作用，故具有抗癲癇和抗驚厥作用。本實驗觀察其抗驚厥作用。尼可剎米是一種呼吸興奮劑，中毒劑量時可以造成機體驚厥甚至是死亡。由於尼可剎米的作用比較強而且本實驗使用的是中毒劑量，故而應先腹腔注射一定量的苯巴比妥鈉後，經過一定時間後再腹腔注射一定量的尼可剎米，觀察有無驚厥的出現從而確定苯巴比妥鈉的抗驚厥作用。

1 實驗材料

1）實驗動物：小白鼠

2）實驗葯品：苯巴比妥鈉，尼可剎米，生理鹽水

3）實驗用具：注射器，電子稱，小白鼠籠

2 實驗步驟

1）每組取四隻小鼠，稱重，並分別編號為1,2,3,4號。

2）1,2兩只小鼠腹腔注射苯巴比妥鈉，0.1ml/10g，3,4兩只小鼠腹腔注射生理鹽水作為對照組，0.1ml/10g。

3）15min後，分別為四隻小鼠注射尼可剎米，0.1ml/10g，並記錄號時間。

4）觀察並記錄四隻小鼠是否出現驚厥或者死亡。

3 實驗結果

經過如上實驗可以得到如下結果：表1

表1

對照組/實驗組驚對照組驚實驗組死對照組死亡組別 實驗組/只 只 厥/只 厥/只 亡/只 /只

1 2 2 0 2 0 1 2 2 2 0 2 0 1 3 2 2 0 2 0 1 4 2 2 0 2 0 1 總數 8 8 0 8 0 4 註：實驗組為注射苯巴比妥鈉的小鼠，對照組為注射生理鹽水的小鼠

通過計算百分率可得表2

實驗驚厥百分率

0% 表2 對照驚厥百分率 實驗死亡率 100% 0% 對照死亡率 50% 4 實驗分析

由以上實驗結果可以看到，注射苯巴比妥鈉的小鼠沒有出現驚厥，也沒有死亡。而注射生理鹽水的小鼠驚厥出現百分率高達100%，

且死亡率達到50%，通過比較兩組實驗結果，就可以明顯的發現，苯巴比妥鈉具有良好的抗驚厥作用，它是一種中樞神經系統抑制葯，主要通過增強GABA 作用以及減弱谷氨酸作用而實現抗驚厥作用。

二 鎮痛實驗

摘要 目的 嗎啡屬於阿片類鎮痛葯，具有強大的鎮痛作用，通過熱刺激（熱板法）或者化學刺激的方式引起小鼠疼痛，在經過嗎啡鎮痛後觀測其痛閾的改變從而觀察嗎啡的鎮痛作用，從而了解其鎮痛效果和機制。 方法 熱板法和化學刺激法 結果與分析 嗎啡對熱刺激或者化學刺激都具有良好的鎮痛作用。

嗎啡是阿片類鎮痛葯的代表葯，具有良好的鎮痛作用，其主要通過激動阿片受體從而產生鎮痛作用，是臨床常用葯，也屬於管制葯。當給與一定的溫度刺激時，小鼠會產生痛覺，小鼠由於腳部的疼痛而發生疼痛反應，從而出現舔後足的現象。出現此現象越快說明疼痛的潛伏期短，也就是痛閾越低。因此，可以通過比較小鼠出現舔足現象的時間來比較痛閾的大小。同理，給與小鼠腹腔化學刺激時，小鼠會出現扭體的現象。

1 實驗材料

1) 實驗動物：小白鼠

2) 實驗葯品：嗎啡，生理鹽水，醋酸

3) 實驗器材：注射器，Woolfe 熱板，電子稱，秒錶，鼠籠。 2 實驗步驟

2-1 熱板法

1）打開熱板預熱。取小鼠，篩選舔足時間在5s-30s之間 的小鼠，稱重，分作兩組，每組兩只，作標記。

2）選定實驗組和對照組，測定每隻小鼠的舔足時間，記錄。

3）實驗組腹腔注射嗎啡0.1ml/10g，對照組注射生理鹽水0.1ml/10g。

4）給葯後分別於15min,30min,45min測小鼠的舔足出現時間，並記錄好。

2-2 化學刺激法

1）每組取四隻小鼠，隨機分作實驗組和對照組，稱重，做標記。

2）實驗組腹腔注射嗎啡0.1ml/10g，對照組腹腔注射生理鹽水0.1ml/10g。

3）20分鍾後，兩組小鼠分別腹腔注射醋酸0.1ml/10g，觀察小鼠是否出現扭體現象並記錄。

3 實驗結果

根據以上實驗，熱板法可得如下表3的結果：

表3

組別

小鼠編

號 第二組 30給葯前 15分鍾 30分鍾 45分鍾 給葯前 15分鍾 分45分鍾

鍾 第一組

1 2 3 4 1 2 3 4 實驗組均值 對照組均值

11 6 14 15

60 42 15

60 57 14

54 41 15 20

13.59 6.5 10.95 6.15

15 22 第三組

給葯前 15分鍾 30分鍾 45分鍾 給葯前

25 16 18 19

56 60 45 30

60 60 30 20

60 60 28 18

23.41 14.18 57.76 40.58

43.

34.41 24 21.17 15.8 23 11.01

13.

13.44 57 9.18

10.

6.96 62 12.5 第四組

30

15分鍾 分45分鍾

鍾 31.

25.61 22 20.04 31.17 60 56.76

27.

16.96 78 17.98 60 60 60

13.02 44.70 50.54 41.20 13.85 20.90 18.37 17.11

說明：1 表格中單位為秒。 2 由於第四組小鼠未經過篩選，故而捨去。

由此作出時-效曲線為圖1所示：

鎮痛與抗驚厥實驗報告

而化學刺激法所得結果如下表4所示

組別 1 2 3 4 總數 實驗組扭體百

分率 對照組扭體百

分率

實驗組/只

2 2 2 2 8 0 100%

表4

實驗組扭體/

對照組/只

只

2 0 2 0 2 0 2 0 8 0

對照組扭體/

只 2 2 2 2 8

4 分析

1）從表3及圖1 可以看出，用葯前實驗組和對照組的痛閾幾乎一樣，而用葯後，實驗組的痛閾明顯高於對照組，這說明嗎啡能提高機體的痛閾值，從而具有良好的鎮痛作用。

2）圖1表明，在經過一段時間的代謝後，機體內的嗎啡含量降低，從而痛閾值也跟著下降。

3）同樣，表4中顯示，注射嗎啡後，扭體實驗為全陰性而對照組為全陽性，同樣說明了嗎啡具有良好的鎮痛作用。

㈨ 小白鼠腹腔注射硫酸鎂有什麼反應

小白鼠可能會死亡的

硫酸鎂的鎂離子在腹腔濃度過高則出現中樞抑制。鎂離子對周圍血管有舒張作用，血鎂過高可引起血壓下降及呼吸停止以至死亡。

化學性質

穩定性：無水硫酸鎂易吸水，七水硫酸鎂易脫水

毒性：低毒

毒理學數據：小鼠皮下： LD50645 mg/kg（小鼠皮下）；小鼠腹腔：670-733mg/kg

刺激性：本品可能引起引起胃痛、嘔吐、水瀉、虛脫、呼吸困難、紫紺等。

(9)動物致敏反應為什麼用腹腔注射擴展閱讀：

危險性概述

健康危害： 本品粉塵對粘膜有刺激作用，長期接觸可引起呼吸道炎症。誤服有導瀉作用，若有腎功能障礙者可致鎂中毒，引起胃痛、嘔吐、水瀉、虛脫、呼吸困難、紫紺等。

環境危害： 對環境有危害，對水體可造成污染。

燃爆危險： 本品不燃，具刺激性。

其它： 該物質對環境有危害，應特別注意對水體的污染。

急救措施

皮膚接觸：脫去污染的衣著，用流動清水沖洗。

眼睛接觸：提起眼瞼，用流動清水或生理鹽水沖洗。就醫。

吸入： 迅速脫離現場至空氣新鮮處。保持呼吸道通暢。如呼吸困難，給輸氧。如呼吸停止，立即進行人工呼吸。就醫。

食入：飲足量溫水，催吐。就醫。

參考資料來源：網路-硫酸鎂