① 如何從大鼠眼眥中取血
1.大鼠麻醉問題;
我們將一浸過乙醚的棉球放在一小盤里，然後放在大鼠附近，再找個能罩住老鼠和盤子的大燒杯樣的東西，留個口罩住老鼠。等他醉了就可實施手術了。要是中途有醒，直接握住大鼠，將其鼻子塞進乙醚的瓶子里。觀察其麻醉狀態。不易過深，要不就死掉了。血都會變成黑色的，還粘稠。手段有些暴力，愛護動物的筒子們不要責怪。
2.取血工具：
我們用的是化學上用來測熔點的毛細管，有一定硬度。用肝素鈉注射液潤洗過的，掰成幾段，太短了手抓著不合適，太長了容易凝血。
3.手術手法：
在大鼠一側的眼內側眼球和內測眼瞼與頭平面呈60度左右的夾角，溫柔的用力，就可見血源了。不要捅的太深，捅到骨頭上，也不會出血。太淺老鼠受罪也取不出血來。要注意剪斷老鼠的胡須，以防干擾或溶血。我都是兩側眼後輪流取的。
還有一個技術關鍵就是血流變慢的時候，要用握大鼠的食指和拇指向腦後靜脈方向用力按壓。或者一開始的時候就要握緊。
剩下的就是收集血液，我們當時是兩個人幫忙完成的，一個人夠嗆。餘下的都不是什麼技術關鍵，不說了。
② 如何從動物血液中分離血清
取得動物血液後直接低速離心，或者實驗要求不高的話可以加入抗凝劑後低速離心
③ 對實驗動物采血的要求
1.小鼠和大鼠采血
（1）眼眶取血：將小鼠抓牢固定，用拇指和食指將眼部皮膚扒開，使眼球充分突出，眼窩內眥處為眼靜脈竇。將毛細管由此刺入，捻轉，輕輕外提，使血液充滿毛細管，采血後用一塊干紗布將眼合上數分鍾以止血。小鼠每次采血0.2～0.3mL，大鼠為0.5～1.0mL。
（2）剪尾采血：固定動物，將尾尖剪掉1～2mm（小鼠）或5～10mm（大鼠），然後自尾根部向尖部按摩，血即自尾尖流出。如需較多血也可先將尾浸於近50℃的熱水中，再剪去尾尖。采血後用膠布包紮尾尖進行壓迫止血。由於鼠血凝集快，需要全血應事先置抗凝劑於采血管中，如用血球懸液，應立即與生理鹽水混合。小鼠可取血0.1mL，大鼠可取0.3～0.5mL。
（3）斷頭取血：斷頭時，左手抓鼠，右手持剪刀於頸部迅速剪掉鼠頭，立即將鼠頸向下，血液即可流入已准備好的容器中
（4）腹主動脈采血：將動物麻醉，仰卧固定，從腹中線切開皮膚，暴露腹主動脈，用注射器抽取血液。
（5）股動（靜）脈采血：將動物麻醉固定後，進行一側腹股溝動、靜脈分離手術，血管下方分別穿一根絲線，左手提起血管，右手持注射器將針平行刺入血管內取血。
（6）心臟采血：動物麻醉後，仰卧固定於鼠板上，在左胸側第三、四肋間，用左手食指觸摸到心搏動處，右手持注射器垂直刺入心臟，抽取所需血量。小鼠取0.5～0.6mL，大鼠取0.8～1.2mL。
2.家兔采血
（1）耳中央動脈采血：將兔固定後，在兔耳中央有一條粗而鮮艷的中央動脈。左手固定兔耳，右手持注射器，在中央動脈末端向心方向刺入動脈，慢慢回抽針芯，動脈血立即進入針筒，一次可取血15 mL。
（2）耳緣靜脈采血：拔去耳緣部被毛，用燈泡照射加熱耳朵或以75%酒精塗擦局部，使靜脈擴張，再用石蠟油塗擦耳緣，防止血液凝固。耳受熱後用小血管夾夾緊耳根部，用粗號針頭逆靜脈迴流方向刺破靜脈或用刀片切開靜脈，血液可自動流出，一般可采血2～3mL。取血後棉球壓迫止血。
（3）心臟采血：操作同鼠類。兔一次最多采血25mL。
（4）股靜脈、頸靜脈采血：做股靜脈、頸靜脈分離術，然後采血。
④ 動物抽血抽什麼部位
大型動物，如牛馬可以抽頸下靜脈血，雞鴨可以抽翅膀下血管
⑤ 請教最簡單的動物血血清提取方法，聽老師說，將動物血放進冰箱冷凍，再讓其自然融化，表面一層就是血清
不對，最簡單最快的方法：取一潔凈的試管或一支一次性注射器，將從動物靜脈上采血3到5毫升置於試管或直接將一次性注射器抽出去一些留點空間，靜置於室溫或稍熱一些的環境下讓其自然凝固很快就會有清亮透明漂亮的血清析出。用吸管輕輕地分離於潔凈的小瓶置於冰箱冷藏就行了…要是冷凍再融化就會有部分溶血的呈現出紅色。
（要斜一點放置，盡量讓其與空氣接觸面大一點，析出來的就多一點；還有一點就是要靜置，不能搖晃。否則就會有溶血出現。）
雞的血清很好分離，又快又多，牛的很慢。
⑥ 生物 實驗動物非洲爪蟾如何取血要不殺死，可重復取血的方法
一般青蛙蟾蜍類少量采血都是腹壁靜脈采血，當然本人認為心臟采血也可以。但是活體不損傷采血有點困難，腹壁靜脈需要開腹腔。體外心臟采血的話對試驗手法要求比較高。
實驗器材和葯品
手術剪、鑷子、蛙板、探針、蛙釘1 mL注射器
實驗方法
1破壞蟾蜍腦和脊髓用探針從蛙枕骨大孔進
入,搗毀腦和脊髓,使骨骼肌鬆弛。
2固定蟾蜍將蟾蜍仰卧在蛙板上。用蛙釘固
定蛙體四肢,打開其胸腔和心包膜,暴露心臟。
3 采血 用注射器向心方向插入腹壁靜脈進行采血