① 如何从大鼠眼眦中取血
1.大鼠麻醉问题;
我们将一浸过乙醚的棉球放在一小盘里，然后放在大鼠附近，再找个能罩住老鼠和盘子的大烧杯样的东西，留个口罩住老鼠。等他醉了就可实施手术了。要是中途有醒，直接握住大鼠，将其鼻子塞进乙醚的瓶子里。观察其麻醉状态。不易过深，要不就死掉了。血都会变成黑色的，还粘稠。手段有些暴力，爱护动物的筒子们不要责怪。
2.取血工具：
我们用的是化学上用来测熔点的毛细管，有一定硬度。用肝素钠注射液润洗过的，掰成几段，太短了手抓着不合适，太长了容易凝血。
3.手术手法：
在大鼠一侧的眼内侧眼球和内测眼睑与头平面呈60度左右的夹角，温柔的用力，就可见血源了。不要捅的太深，捅到骨头上，也不会出血。太浅老鼠受罪也取不出血来。要注意剪断老鼠的胡须，以防干扰或溶血。我都是两侧眼后轮流取的。
还有一个技术关键就是血流变慢的时候，要用握大鼠的食指和拇指向脑后静脉方向用力按压。或者一开始的时候就要握紧。
剩下的就是收集血液，我们当时是两个人帮忙完成的，一个人够呛。余下的都不是什么技术关键，不说了。
② 如何从动物血液中分离血清
取得动物血液后直接低速离心，或者实验要求不高的话可以加入抗凝剂后低速离心
③ 对实验动物采血的要求
1.小鼠和大鼠采血
（1）眼眶取血：将小鼠抓牢固定，用拇指和食指将眼部皮肤扒开，使眼球充分突出，眼窝内眦处为眼静脉窦。将毛细管由此刺入，捻转，轻轻外提，使血液充满毛细管，采血后用一块干纱布将眼合上数分钟以止血。小鼠每次采血0.2～0.3mL，大鼠为0.5～1.0mL。
（2）剪尾采血：固定动物，将尾尖剪掉1～2mm（小鼠）或5～10mm（大鼠），然后自尾根部向尖部按摩，血即自尾尖流出。如需较多血也可先将尾浸于近50℃的热水中，再剪去尾尖。采血后用胶布包扎尾尖进行压迫止血。由于鼠血凝集快，需要全血应事先置抗凝剂于采血管中，如用血球悬液，应立即与生理盐水混合。小鼠可取血0.1mL，大鼠可取0.3～0.5mL。
（3）断头取血：断头时，左手抓鼠，右手持剪刀于颈部迅速剪掉鼠头，立即将鼠颈向下，血液即可流入已准备好的容器中
（4）腹主动脉采血：将动物麻醉，仰卧固定，从腹中线切开皮肤，暴露腹主动脉，用注射器抽取血液。
（5）股动（静）脉采血：将动物麻醉固定后，进行一侧腹股沟动、静脉分离手术，血管下方分别穿一根丝线，左手提起血管，右手持注射器将针平行刺入血管内取血。
（6）心脏采血：动物麻醉后，仰卧固定于鼠板上，在左胸侧第三、四肋间，用左手食指触摸到心搏动处，右手持注射器垂直刺入心脏，抽取所需血量。小鼠取0.5～0.6mL，大鼠取0.8～1.2mL。
2.家兔采血
（1）耳中央动脉采血：将兔固定后，在兔耳中央有一条粗而鲜艳的中央动脉。左手固定兔耳，右手持注射器，在中央动脉末端向心方向刺入动脉，慢慢回抽针芯，动脉血立即进入针筒，一次可取血15 mL。
（2）耳缘静脉采血：拔去耳缘部被毛，用灯泡照射加热耳朵或以75%酒精涂擦局部，使静脉扩张，再用石蜡油涂擦耳缘，防止血液凝固。耳受热后用小血管夹夹紧耳根部，用粗号针头逆静脉回流方向刺破静脉或用刀片切开静脉，血液可自动流出，一般可采血2～3mL。取血后棉球压迫止血。
（3）心脏采血：操作同鼠类。兔一次最多采血25mL。
（4）股静脉、颈静脉采血：做股静脉、颈静脉分离术，然后采血。
④ 动物抽血抽什么部位
大型动物，如牛马可以抽颈下静脉血，鸡鸭可以抽翅膀下血管
⑤ 请教最简单的动物血血清提取方法，听老师说，将动物血放进冰箱冷冻，再让其自然融化，表面一层就是血清
不对，最简单最快的方法：取一洁净的试管或一支一次性注射器，将从动物静脉上采血3到5毫升置于试管或直接将一次性注射器抽出去一些留点空间，静置于室温或稍热一些的环境下让其自然凝固很快就会有清亮透明漂亮的血清析出。用吸管轻轻地分离于洁净的小瓶置于冰箱冷藏就行了…要是冷冻再融化就会有部分溶血的呈现出红色。
（要斜一点放置，尽量让其与空气接触面大一点，析出来的就多一点；还有一点就是要静置，不能摇晃。否则就会有溶血出现。）
鸡的血清很好分离，又快又多，牛的很慢。
⑥ 生物 实验动物非洲爪蟾如何取血要不杀死，可重复取血的方法
一般青蛙蟾蜍类少量采血都是腹壁静脉采血，当然本人认为心脏采血也可以。但是活体不损伤采血有点困难，腹壁静脉需要开腹腔。体外心脏采血的话对试验手法要求比较高。
实验器材和药品
手术剪、镊子、蛙板、探针、蛙钉1 mL注射器
实验方法
1破坏蟾蜍脑和脊髓用探针从蛙枕骨大孔进
入,捣毁脑和脊髓,使骨骼肌松弛。
2固定蟾蜍将蟾蜍仰卧在蛙板上。用蛙钉固
定蛙体四肢,打开其胸腔和心包膜,暴露心脏。
3 采血 用注射器向心方向插入腹壁静脉进行采血