❶ 简述犬前肢静脉采血的过程
犬采血法包括心脏采血、前、后肢皮下静脉采血、颈静脉采血、股动脉采血、耳缘静脉采血。
1．心脏采血
将犬仰卧固定于固定台上，前肢面背测方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3～5肋间的被毛，做皮肤消毒。取61/2号针头的注射器在胸骨左缘处1cm第四肋间处进针，并向犬背侧方向垂直刺入心腔。穿刺者可随针头接触心脏跳动时的感觉，随时调整刺入方向和深度，但针头不能在胸腔内搅动。当针头正确刺入心脏时，血液即进入注射器，便可抽取多量血液。一般犬的血量为每千克体重80ml血液。
2．前、后肢皮下静脉采血
取血方法基本同犬后股外侧小隐静脉和前肢内侧皮下的头静脉注射方法。如需要较多量血时，则可用注射器直接抽取。抽吸速度要慢，否则针口吸着血管内壁，血液不能进入注射器。如只需要采取少量血液，则不必用注射器抽出，只需要用51/2号针头直接刺入静脉，如针头正确刺入静脉，血液会自动从针孔滴出，用瓷反应碟接住滴下的血液，可做血常规等检测。
3．颈静脉采血
犬固定好后(经过训练的犬不必固定)，取侧卧位，剪去颈部被毛10cm×3cm范围，皮肤消毒。将犬颈部拉直，头尽量后仰。用左手拇指压住颈静脉入胸部位的皮肤，使颈静脉怒张，右手取连有61/2号针头的注射器，针头沿血管平行方向向心端刺入血管。由于此静脉在皮下容易滑动，针刺时除用左手固定好血管外，刺入要准确。取血后注意压迫止血。
4．股动脉采血
犬可不麻醉。背卧后固定，伸展后肢向外拉直，暴露腹股沟，在腹股沟三角取动脉搏动的部位剪去被毛，消毒皮肤。左手中指、食指、探摸股动脉跳动部位并固定好血管，右手取连有5号针头的注射器，针头由动脉跳动处直接刺入血管，当血液进入注射器内时，即可根据需要量抽取血液。取完血后用干纱布压迫止血2～3min。
5．耳缘静脉采血
经训练的犬不必绑嘴，让犬跳上采血台，剪去耳尖部短毛，即可见到耳缘静脉。揉搓耳朵，使静脉充盈，皮肤涂少许凡士林，用51/2号针头刺破静脉，用右手顺静脉走向由头端向耳尖部轻轻挤压，血液即由破口流出。取完血后用干棉球压迫止血。
狗分布于世界各地。它们在群居时，也有“等级制度”，可以保持整个群体的稳定，减少因为食物、生存空间和异性的争夺而引起的恶斗和战争。狗具有领地习性，自己占有一定范围，并加以保护，不让其他动物侵入。狗狗的眼球水晶体比较大，像马的眼球一样变形。犬齿全部为短冠形，上颌第一、二门齿齿冠为三峰形，中部是犬尖峰，两侧有小尖峰。在中国文化中，狗属于十二生肖之一，在十二生肖中的第11位。
狗是由狼驯化而来的。早在狩猎采集时代，人们就已驯养狗为狩猎时的助手。因此，狗算是人类最早驯养的家畜。河北武安磁山、河南新郑裴李岗、浙江余姚河姆渡等遗址，都发现了狗骨骼，足证其驯养历史之久远。 山东胶县三里河出土的狗形鬶，造型生动逼真，使我们得见新石器时代家犬的形态特征。陕西西安半坡遗址出土的狗骨，头骨较小，额骨突出，肉裂齿小，下颌骨水平边缘弯曲，与华北狼有很大区别，说明人类驯养狗的历史确实很早。
没有人确切知道人与狼第一次互动发生在什么时候。有科学家认为可能是在5万年之前，因为至少要花这么久的时间野狼才能发展出如今的基因差异。当时人与野狼分布在地球表面的许多地方，演化过程可能发生在好几个不同的地区。有些学者则认为狼在14000年前，甚至可能在16000年前的亚洲东南部，就已经被人类从野生狼驯化为家畜、即狗，用来玩、打猎、看家护院。
犬的生物学起源可追溯到几千万年前，犬的驯化史大约在一万五千年前的中石器时代，甚至有科学家从遗传学的角度论证称，可能早在距今10万年前，犬就已被人类驯化。 人类首次破译犬的基因组是在2005年——甚至比研究人员利用遗传学工具追踪犬类最早的家园还要早。早期研究在东亚发现了犬基因的高度多样性，并在许多乡村犬群里发现了其他一些关键性的标记，他们因此指出东亚地区是犬被人类驯养最早的地方。
饮食
狗是肉食动物，在喂养时，需要在饲料中配制较多的动物蛋白，辅以素食成分，以保证狗的正常发育和健康。狗有时会吃草，但吃得很少，偶尔也吐掉，狗吃草不是为了充饥，而是为了清胃，主要因狗的肠胃结构独特。狗的胃很大，约占腹腔的2/3，而肠子却很短，约占腹腔的1/3，所以狗基本上是用胃来消化食物和吸收营养，容易消化肉类食物，不易消化像树叶、草等有“筋”的东西。虽然犬属于食肉动物，但生存艰难时犬可以依靠蔬菜和谷物这类食物活下去。典型的野生食肉动物的这类饮食营养来自它们捕获的食草动物的胃部内容物。另外，科学家发现对诸如在像在阿拉斯加爱迪塔罗德（Iditarod）进行的狗拉雪橇比赛以及其他类似经受极端压力的情况，高蛋白食物（大量食用肉类）可以帮助它们防止肌肉组织受到损伤。狗喜欢啃咬骨头。这也是原生态时撕咬猎物所留下的习惯。我们在喂养时要经常给它一些骨头。（切记：不可用禽骨，那样可能会刺穿狗的肠胃）。狗普遍存在不同程度的以人类和自身粪便为食的习性。
❷ 兔子如何采血
⑴ELISA耳静脉采血本法为最常用的取血法之一，常作多次反复取血用，因此，保护耳缘静脉，防止发生栓塞特别重要。将兔放入仅露出头部及两耳的固定盒中，或由助手以手扶住。选耳静脉清晰的耳朵，将耳静脉部位的毛拔去，用75％酒精局部消毒，待干。用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张，用连有5（1/2）号针头的注射器在耳缘静脉末端刺破血管待血液漏出取血或将针头逆血流方向刺入耳缘静脉取血，取血完毕用棉球压迫止血，此种采血法一次最多可采血5-10ml.
⑵耳中央动脉 采血将兔置于兔固定筒内，在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，用左手固定兔耳，右手取注射器，在中央动脉的末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，即可见动脉血进入针筒，取血完毕后注意止血。此法一次抽血可达15ml.但抽血时应注意，由于兔耳中央动脉容易发生痉挛性收缩，因此抽血前，必须先让兔耳充分充血，当动脉扩张，未发生痉挛性收缩之前立即进行抽血，如果等待时间过长，动脉经常会发生较长时间的痉挛性收缩。取血用的针头一般用6号针头，不要太细。针刺部位从中央动脉末端开始。不要在近耳根部取血，因耳根部软组织厚，血管位置略深，易刺透血管造成皮下出血。
⑶心脏取血
将家兔仰卧固定，在第三肋间胸骨左缘3毫米处注射针垂直刺入心脏，血液随即进入针管。注意事项有：⑴动作宜迅速，以缩短在心脏内的留针时间和防止血液凝固；⑵如针头已进入心脏但抽不出血时，应将针头稍微后退一点。⑶在胸腔内针头不应左右摆动以防止伤及心、肺，一次可取血20-25ml .
⑷后肢胫部皮下静脉取血
将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。拔去胫部则在胫部外侧浅表皮下，被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，可清楚见到皮下静脉。用左手两指固定好静脉，右手取带有5（1/2）号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。一次可取2-5ml.取完后必须用棉球压迫取血部位止血，时间要略长些，因此处不易止血。如止血不妥，可造成皮下血肿，影响连续多次取血。
⑸股静脉、颈静脉取血
先作股静脉和颈静脉暴露分离手术
股静脉取血：注射器平行于血管，从股静脉下端向心方向刺入，徐徐抽动针栓即可取血。抽血完毕后要注意止血。股静脉较易止血，用于纱布轻压取血部位即可。若连续多次取血，取血部位宜尽量选择靠离心端。
❸ 小鼠要怎么取血
主要有三类方法：
1、少量取血：鼠尾采血法——固定动物并露出鼠尾，将尾部侵入45-50度温水中数分钟，使静脉充血，擦干，再用酒精棉球擦拭消毒。剪掉尾尖约0.2-0.3cm。拭去第一滴血。然后用毛细管定量吸取尾血。采血完毕用棉球压迫止血
2、中等量取血：眼眶静脉丛采血——左手拇指及食指紧紧握住小鼠颈部，压迫颈部两侧使眶后静脉丛充血，但用力要恰当，防止动物窒息死亡。右手持玻璃毛细管从右眼或左眼内眦部以45度角刺入，刺入深度为2-3mm。若遇阻力稍后调整角度后再刺入，如穿刺恰当，血液能自然流入毛细管内。得到血厚，即除去颈部压力，拔出毛细管，用干棉球压迫止血
3、大量采血：断头采血——用于动物实验结束后。左手握住小鼠，右手持剪刀，快速剪掉头颈部，倒立动物让血液滴入容器。注意防止断毛落入
❹ 生化检验血液标本采集和处理
生化检验血液标本采集和处理
临床检验的目的是为临床提供准确可靠的实验诊断依据。为了保证实验数据的可靠性，在检验医学中必须坚持全面质量控制(total quality control，TQC.即指对影响临床检验结果可靠性的各方面因素及各个环节进行质量控制)和全过程质量控制(即指对实验工作的全过程进行质量控制和质量管理)。全过程质量控制包括实验前(分析前)、实验中(分析中)和实验后(分析后)三个阶段的质量控制。在实验误差中实验前误差占70%，因而实验前质量保证对减少实验误差显得尤其重要。下面是我为大家带来的关于生化检验血液标本采集和处理的知识，欢迎阅读。
一、临床化学检验血液标本的定义
临床化学检验血液标本是指为完成某项或多项临床化学检验项目而采集的一定量的血液，包括抗凝及非抗凝血。
二、血液标本的采取
(一) 采取部位
1.静脉采血：应用最多的采血方式。常用的静脉为肘前静脉、腕背静脉，小儿和新生儿有时用颈静脉和前囟静脉。
2.动脉采血：主要用于血气分析时。常用的动脉为股动脉、肱动脉、桡动脉和脐动脉。
3.毛细血管采血：适用于仅需微量血液的试验或婴幼儿。 常用部位为耳垂、指端，小儿有时为大趾和足跟。采血针刺入皮肤深度应为2mm (<2.5mm)， 采血局部应无炎症、水肿等。
(二)标本类型
临床化学检验血液标本分为血清、血浆和全血3种。血清和血浆为临床常用， 除前者不含纤维蛋白原外，其余多数化学成分无差异;全血只有在红细胞内成分与血浆成分相似时才用; 血气分析、血红蛋白电泳等时用全血， 一般临床化学分析多不用全血。
三、全血处理为血清或血浆
血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清(浆)从与血细胞接触的全血中分离出来。一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。全血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要求。
(一)离心前阶段
即指标本采集到离心处理前的一段时间。
1.血清：标本离心前一般应令其自行凝集，不可用木棍等剥离凝血块。通常于室温(22～25℃)放置30～60 min 血标本可自发完全凝集;冷藏标本凝集缓慢;加促凝剂时凝集加快(标本采集后应轻轻颠倒混合5～10次，以确保促凝剂作用)。
2.血浆：需用血浆标本时，必须使用含抗凝剂的血液标本收集管，而且采血后必须立即轻轻颠倒采血管混合5～10次(以确保抗凝剂发挥作用)，5～10 min 后即可分离出血浆。
3.冷藏标本：标本冷藏可抑制细胞代谢，稳定某些温度依赖性成分但全血标本一般不能冷藏;血钾测定标本冷藏不得超过2h. 血液中儿茶酚胺、pH /血气、氨、乳酸、丙酮酸、胃泌素、甲状腺激素等检测时需用制冷的标本。
标本需要冷藏(2～8℃)时，标本采取后应立即将标本置于冰屑或冰水混合物(不可用大冰块)，并且必须保证标本与制冷物充分接触，保证制冷物达到标本的高度。
4.代谢抑制剂和防腐剂：某些添加剂加入血液标本中能抑制细胞代谢，可以防止血液标本贮存时分析物浓度的变化。血液葡萄糖测定时，如在血液中加入氟化钠，在血细胞未分离的情况下，葡萄糖在22～25℃时可稳定24h，2～8℃ 时可以稳定48h;但在新生儿和儿童标本，由于红细胞压积高，用氟化钠难以控制细胞的糖酵解作用;甲醛-草酸钾抗凝保存剂不适合血糖测定;氟化钠-麝香草酚混合剂因能抑制酶活性，不适用于酶学测定。
5.标本采集现场：(1)标本采集后应尽快送往实验室，尤其当收集区温度超过22℃时此点更为重要;(2)血液标本采集后血管必须加塞、管口向上、垂直放置，以减少管中内容物振动，促进凝血完全，防止标本蒸发、污染和外溅等;(3)已收集的血液标本应温和地处理，要防止标本管振荡所造成的溶血;溶血可影响测定结果。有严重影响(使结果升高)的项目有：乳酸脱氢酶、血清门冬氨酸氨基转移酶、血清钾和血红蛋白;引起值得注意的影响的项目有：血清铁(↑)、血清丙氨酸氨基转移酶(↑)和血清甲状腺素(↓);轻度受影响(增加)的有： 总蛋白、白蛋白、血清磷、血清镁、血清钙和酸性磷酸酶; (4)应避免对光线敏感的分析物暴露在人造光或太阳光(紫外线)照射下。如 VA 、VB6 、β- 胡萝卜素、卟啉、胆红素等测定时，标本管应该用铝箔或类似物质包裹保护起来。
6.标本运送：全血标本应尽快从采血现场运送至实验室，如果运送距离较远，特别是因分析物稳定性有影响，必要时可于采血现场分离出血清或血浆后，再送往实验室;标本运送过程中要注意标本的包装、温度要求、处理方法等，要确保分析成分的稳定性;标本管在运送过程中要保持管口封闭、向上垂直放置。
7. 实验室接受标本及离心标本准备：(1)要有标本收取记录(应认真核对检验中清单，对有关情况要认真记录，标本接收及处理应签字登记); (2)对接受的标本要予以分类准备离心;(3)实验室接受标本后应仍保持标本管于密闭封口、 管口向上，垂直位放置。管塞移去后血中CO2丢失，会造成pH增加，离子钙和酸性磷酸酶减少， 尤其pH变化会影响某些检测结果的准确性;(4)标本凝集时间要充分 ;加抗凝剂的血液标本可以立即离心;加促凝剂的`标本可于采血后5～15 min 尽早离心;抗凝的全血标本(锌、锂、原卟啉等测定时)可以不离心;(5)冷藏(2～8℃)标本应保持这个温度直到准备离心。推荐用温度控制离心机; (6)离心标本前不主张用小木棒或类似器材去剥离附着于试管壁和管塞上的凝块，人为剥离会诱导溶血。如果必须露出试管壁或取下管塞时，一定要十分注意，动作一定要轻柔。
(二)离心阶段
即指标本处于离心机里的一段时间。
1. 离心时间和相对离心力(RCF)：临床化学分析血液标本离心时，RCF(1000～1200)× g，离心时间为5～10 min.
2. 温度控制离心： 离心时产热不利于分析物稳定，临床化学分析血液标本离心时必须采用温度控制离心机。 一些温度依赖性分析物 (如促肾上腺皮质激素、环腺苷酸、 儿茶酚胺等)应在4℃分离; 无特殊温度要求的分析物，离心温度应设定在20℃ ～22℃;温度低于15℃可以人为地使血钾测定值增高;冷藏运送的标本必须在要求的温度下离心。
3.关于再离心：标本离心最好一次完成，若需再次离心，应距上次离心相隔时间很短;对于含有分离物质的血标本绝不可以再离心。
(三)离心后阶段
指标本离心后和用于检测的血清或血浆被取出一定量之前的一段时间。
1. 血清或血浆与接触的血细胞和凝块的分离应在采血后尽快(2h内)完成。
2. 分离的血清或血浆的贮存：实验室的室温和血清或血浆的贮存温度、时间，是分析物稳定性和测定结果准确性的重要参数。(1)于22℃～25℃血清或血浆的保存不超过8h;(2)实验于8h内不能完成时，血清或血浆应置2℃～8℃保存;(3)48h内不能完成的实验项目，或分离的血清或血浆需贮存48h以上时，应于-20℃保存; (4)标本不可反复冻融(只能冻融一次)， 且不可贮存于无霜冰箱(可造成样品温度变化);(5)离心后分离凝胶(凝胶屏障)上面的血清可保存2～5天(亦有报道4℃可贮存24h) ，但必须保证凝胶的完整性;但应用非凝胶分离物质时，离心后必须立即将血清或血浆移出。(6)血清或血浆必须保存于密闭的试管中。
四、血清或血浆分离物质
是指将血清或血浆从全血中分离出来的物质，包括凝胶物质与非凝胶物质。
(一)凝胶物质
为一类具有特定粘度和特殊比重(介于血清或血浆与凝块之间的比重)的惰性凝胶物质，用(1000～1100)× g RCF离心10 min， 能在血清或血浆与凝块之间形成不可穿透的凝胶屏障，从而将血清或血浆与其接触的血细胞、凝块分开。
(二)非凝胶物质
是由惰性物质(玻璃、塑料、纤维、毛毡等)构成的小珠、盘、滤器、纤维塞等组成。具有介于血清或血浆与凝块之间的比重，将其轻轻加入血管中，用(1000～ 1100)× g RCF 离心10 min时， 可透过血液移动至血清或血浆与血细胞、凝块之间，形成一个界面，使血清或血浆被分离出来。
(三)完整的凝胶管系统
该系统是由一个真空采血管(硅化塑料管)、内含惰性凝胶物质、促凝剂或抗凝剂组成。使用时要注意该产品必须具有相应性能证书和有效期，并且必须在其有效期内正确使用。
;❺ 动物血样采集和血样处理应该注意哪些问题
一、选择好最佳采血时间
要选择好采血时间与免疫日期的间隔。鸡新城疫、禽流感、猪瘟、牛羊口蹄疫在免疫21天后采血，猪口蹄疫、高致性猪蓝病在免疫后28天采血。因为疫苗接种后，动物体内产生稳定抗体水平，需要一定的时间和过程。
二、做好血样采集前的准备工作
采样前，准备好采样所需的物品和防护用品，，如酒精棉、一次性注射器、记号笔、自封袋、标签、胶皮手套、口罩、防护服、胶鞋、保温箱等。
三、采样前消毒，采样后止血
采血前用75%酒精棉球局部消毒，以避免畜禽因采血而发生局部感染；鸡的皮肤游离性比较大，采血后容易形成血肿，所以采血后，要搞好止血，把酒精棉球挤净，压迫采血部位，防止血流过多。
四、保证血清质量
获得符合卫生要求和高质量的血清是采血的关键。采血方法同静脉注射，只是静脉注射的方向是针头扎向近心端，而采血的方向则相反，针头扎向远心端，这样采血顺利。采血时应使血液沿采血管壁流入瓶中，不能让血液直冲瓶底或滴入瓶底，容易引起溶血。
采完的血不要将采血管立放，这样血清不易析出。要将采血管塞好后平放或斜放于容器中，血清就会自然析出，也可用离心机分离血清。血样采好后，在来回的拿取的过程中， 要尽量避免振荡，防止溶血，影响监测结果。
五、保证采血样品量
在基层采血主要是作抗体效价的监测，一份血清可能做几种病的抗体效价监测，另外，有可能进行复查，所以血样一定要足。一般牛、猪、鸡血不少于3ml，血清量不少于1ml。
六、样品要有代表性
在同群中要随机抽样，不要挑着抽。更不要专挑那些不健康、消瘦。如果挑着采样，样品代表不了整体，监测的效果没有什么意义。抽样监测结果要代表群体，从抽样的抗体合格率率反应整体的合格率，只有随机才有代表性。
~ 1 / 2 ~
七、采样的标记要填写规范
采血完成后，务必把采血的容器用标记笔记上标号或粘贴编号，同时填写采样单，并一一对应。
采样单是对采样品种群基本情况的简要记录，一定要认真填写，包括畜主、饲养量、采样量、采样时间、免疫时间、疫苗种类、生产厂家、剂量都要一一填写完整。
八、样品的保存
血样采好后，标记、整理、归类。
❻ 如何给鹦鹉抽血
脉和心脏采血法，前者所采血量一般能够满足检测所需要的量，后一种方法的技术要求比较高，因此禽类翼下静脉采血法是一种比较常用的采血方法。禽类翼下静脉采血：
1.由助手将禽固定好，并使禽翅膀展开，露出腋窝部，拔去该部羽毛，即可见到由翼根进入腋窝的一条较粗的静脉，这就是翼根静脉。其远心端有一条较细的静脉，即翼下静脉。消毒后，术者用左手拇指压迫翼下静脉的近心端，使血管怒张，右手持带6号或7号针头的采血器，由翼根的肌肉处进针，向翅膀方向斜向刺入翼下静脉，即可抽取血液。
2.抽血时，一定要缓慢、轻柔，否则会使静脉瘪陷而采不出来。采血完毕，拔出采血针，采血部位以酒精棉按压片刻即可，由于肌肉自身的收缩压迫止血，一般不会出血或者是形成出血性水肿。
此种方法克服了传统由皮肤直接刺向血管，拔出针头后一般都会出血或形成皮下出
❼ 动物抽血抽什么部位
大型动物，如牛马可以抽颈下静脉血，鸡鸭可以抽翅膀下血管
❽ 对实验动物采血的要求
1.小鼠和大鼠采血
（1）眼眶取血：将小鼠抓牢固定，用拇指和食指将眼部皮肤扒开，使眼球充分突出，眼窝内眦处为眼静脉窦。将毛细管由此刺入，捻转，轻轻外提，使血液充满毛细管，采血后用一块干纱布将眼合上数分钟以止血。小鼠每次采血0.2～0.3mL，大鼠为0.5～1.0mL。
（2）剪尾采血：固定动物，将尾尖剪掉1～2mm（小鼠）或5～10mm（大鼠），然后自尾根部向尖部按摩，血即自尾尖流出。如需较多血也可先将尾浸于近50℃的热水中，再剪去尾尖。采血后用胶布包扎尾尖进行压迫止血。由于鼠血凝集快，需要全血应事先置抗凝剂于采血管中，如用血球悬液，应立即与生理盐水混合。小鼠可取血0.1mL，大鼠可取0.3～0.5mL。
（3）断头取血：断头时，左手抓鼠，右手持剪刀于颈部迅速剪掉鼠头，立即将鼠颈向下，血液即可流入已准备好的容器中
（4）腹主动脉采血：将动物麻醉，仰卧固定，从腹中线切开皮肤，暴露腹主动脉，用注射器抽取血液。
（5）股动（静）脉采血：将动物麻醉固定后，进行一侧腹股沟动、静脉分离手术，血管下方分别穿一根丝线，左手提起血管，右手持注射器将针平行刺入血管内取血。
（6）心脏采血：动物麻醉后，仰卧固定于鼠板上，在左胸侧第三、四肋间，用左手食指触摸到心搏动处，右手持注射器垂直刺入心脏，抽取所需血量。小鼠取0.5～0.6mL，大鼠取0.8～1.2mL。
2.家兔采血
（1）耳中央动脉采血：将兔固定后，在兔耳中央有一条粗而鲜艳的中央动脉。左手固定兔耳，右手持注射器，在中央动脉末端向心方向刺入动脉，慢慢回抽针芯，动脉血立即进入针筒，一次可取血15 mL。
（2）耳缘静脉采血：拔去耳缘部被毛，用灯泡照射加热耳朵或以75%酒精涂擦局部，使静脉扩张，再用石蜡油涂擦耳缘，防止血液凝固。耳受热后用小血管夹夹紧耳根部，用粗号针头逆静脉回流方向刺破静脉或用刀片切开静脉，血液可自动流出，一般可采血2～3mL。取血后棉球压迫止血。
（3）心脏采血：操作同鼠类。兔一次最多采血25mL。
（4）股静脉、颈静脉采血：做股静脉、颈静脉分离术，然后采血。
❾ 暹罗怎么采血
一般采取颈部静脉采血。
根据体重，25kg体重的狗狗每次可采血375-500ml；献血猫的一次献血10ml/kg，是非常安全的，若超过50ml血量，需要给猫咪输液以补充血容量。
献血注意事项：1、献血猫犬在采血前，需要禁食6到8个小时，不需要禁水。2、尽量不要让宠物太兴奋。3、在相对较短的时间内反复献血可导致贫血，除非绝对必要，否则应避免频繁献血。